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              產品詳情
              • 產品名稱:動物代謝系統

              • 產品型號:Oxylet
              • 產品廠商:動物代謝監測系統
              • 產品價格:0
              • 折扣價格:0
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              簡單介紹:
              Panlab動物代謝系統Oxylet System是公認的研究代謝行為的*好的系統之一,全球*大的動物實驗儀器供應商Harvard和Stoelting,都指定Panlab的動物代謝測量分析系統Oxylet系統為唯壹的代謝研究設備,推薦給研究者。動物代謝測量分析系統由不同的傳感器組成,并為每一種動物都整合了大量的信息。動物代謝測量分析系統同時大鼠和小鼠在籠的居住環境中監測幾組生理和行為參數。
              詳情介紹:

              型號:Oxylet
              品牌:panlab



              動物代謝系統由不同的傳感器組成,并為每一種動物都整合了大量的信息。動物代謝測量分析系統可以自動地,無干涉地長期對大量的動物進行監測(24小時甚至連續幾天)。動物代謝測量分析系統同時大鼠和小鼠在籠的居住環境中監測幾組生理和行為的參數。
               
               
              動物代謝系統Oxylet 是一套模塊化的系統,研究者可選擇性地對動物的呼吸代謝(O2消耗和CO2產出)、飲食與飲水量、運動活性和站立行為等進行分別監測,并將研究數據結合起來進行分析。

                  動物代謝系統Oxylet的動物籠采用Allentown Caging Equipment(ACE)生產的標準動物籠體并進行進一步加工?;\體耐高溫高壓處理,便于**清理?;\體以外的其它配件:密閉籠蓋、網格地板、飲食和飲水槽等,都可以單獨定制。特別是,獨特設計的密閉籠蓋可以改變動物籠的空間,使一套呼吸檢測系統可以同時適用于大鼠和小鼠實驗。

              動物代謝系統Oxylet可監測參數包括

              飲水與喂食(數量和模式)

              新陳代謝的表現(氧氣的消耗和二氧化碳的排出)

              在居住籠中的活動

              轉輪跑臺等活動(可選)

              1.飲食與飲水監測:

                 Panlab自主研發的靈敏重力傳感技術取代了傳統的外置電子秤來對動物飲食飲水量進行監測。傳感器、電信號放大器和數模轉換器等靈敏元件被完全整合在籠體下部的金屬底座(Platform)內。Platform面板提供了完整的操作按鈕,并有LED顯示屏顯示當前的數據。飲食、飲水槽的重量變化,通過巧妙設計的導力支架被平臺內的傳感器接收,其中食物和水的測量精度分別高達0.02g和0.01g!實際測量中的系統擾動誤差值也分別控制在0.02g和0.01ml以內!飲食飲水監測達到如此高的**度和穩定性在市場中****!
                
              飲食槽和飲水槽分別采用了巧妙的回收設計,將動物進食過程中泄漏的食物和水回收并從真實數據中自動去除,大大提高了長期記錄的數據精度。

              綜合以上性能特點,使Panlab Oxylet系統可以真正用于小鼠的攝入代謝長期監測。

              為了滿足特定的研究需要,如研究動物對不同實物的偏好和飲食模式等,其中的飲食和飲水槽還可以分別互相替換,例如改裝兩個飲食槽、兩個飲水槽。




              2.呼吸代謝檢測: 

                 動物代謝系統Oxylet呼吸代謝的測量原理是通過檢測動物呼吸氣體中O2和CO2成分的變化間接的計算出動物能量的消耗,   這也是目前實驗室用于嚙齒類動物能量代謝檢測常用的方式。
                
               動物代謝測量分析系統Oxylet的氣體流量控制器保證在密閉籠體中維持恒定的空氣流量,流速可以在0至20L/min內連續**地設定。流速的**調節,保證了無論動物處于劇烈運動還是休眠狀態,都可以得到十分有效的呼吸代謝數據。該流量控制器一般為2通道或4通道設計,例如一款4通道Oxylet流量控制器可以獨立地分別控制4個籠體的空氣流動。通過獨特的籠蓋設計,使籠體內的空間根據實驗動物的不同而改變,分別適用于大鼠和小鼠。

                
                   動物代謝系統主要特點: 

              先進化設計動物代謝研究系統

              市面*變通的體系

              硬軟件設計友好,操作簡便

              標準飼養籠提供動物舒適環境,使其籠內行為正常

              所有飼養籠無需作任何修改

              小鼠與大鼠組合系統,可進行**的研究

              飲水取食行為

              尿液與糞便的產生量

              間接量熱,可對動物呼吸代謝進行研究(包括O2消耗,CO2產生,呼吸交換率,籠內溫度變化等)

              動物在籠內的運動監測和記錄

              轉輪運動

              連續數日進行短期/長期監測

              能多只動物同時檢測

              得到食物和液體消耗量,**到0.01gml,同時能記錄排糞和排尿量


              系統配合動物代謝測量分析系統軟件可進行實驗設計、數據記錄和分析過程。

              動物代謝監測系統有自己的標準組成部分。這些部分模塊化地結合和組成起來,并根據您不同的需要為您的科研提供有效的工具


               


              經過流量控制的氣流被采樣輸入至系統中*核心的部件&mdash;&mdash;氣體成分分析儀。分析儀中安放了靈敏的光電二極管氧氣探頭、和紅外感應二氧化碳探頭來精準監控氣體成分的改變,采集精度達到*高的0.01%。該系統還能在一些特殊的研究場合使用,如新生大鼠的微弱呼吸代謝檢測、于Treadmill跑步機運動同步的能量消耗檢測等。

              Oxylet軟件能自動計算平均氧氣消耗(VO2)、平均二氧化碳排量(VCO2)、以及呼吸商(RQ=VCO2/VO2),并自動按以下公式推算換能率:
              EE=(3.815+(1.232xRQ))xVO2x1.44

              &bull; 熱量檢測儀能測量O2 消耗量(VO2), CO2產生量 (VCO2), 呼吸交換率(RER), 熱量的產生以及溫度。
              &bull; 量熱計直接測量和儲存實驗時間日期,籠內O2 和 CO2 濃度,空氣流速和溫度(以每個籠為單位),計算VO2, VCO2,RER 和 熱量。
              &bull; 量熱計特殊的動物籠能連接空氣進氣管,出氣管,獨立的樣品連接以及可選的溫度傳感器。
              &bull; 呼吸代謝檢測儀高精度傳感器能準確測量O2, CO2 濃度,溫度和氣流控制。


              3.運動活性和站立(Rearing)監測

                 動物代謝測量分析系統Oxylet系統通過位于籠體底部四腳的振動傳導裝置以及位于Platform上相應位置的運動傳感器感受動物運動活性;通過架設獨立的一對紅外感應條來監測動物站立行為。平臺內的運動傳感器能感受到動物非常微小的活動,可**地用于小鼠活動監測。紅外感應條作為附加模塊,可以為有站立行為研究需要者選購。動物活動性數據可以直接導入計算機中由專門的軟件模塊METAACT分析和生成數據圖表,也可以在每個籠子下方Platform的LED顯示屏中實時查看到。

              兩種運動傳感器:

              -- 在X,Y,Z三維方向上,紅外光柱傳感器支架包圍飼養籠

              ---在籠蓋頂端,安裝紅外熱傳感器,用于監測總運動

               

              為實現運動測量,動物籠放在紅外光柱傳感器支架內。光柱傳感器安裝在X和Y方向上,此外可以補充可調整的高度Z(垂直于X),用于站立指示器。光柱被截斷的狀態隨著動物的運動而變化。每個變化都將登記為一次計數。這意味著如果長久性截斷光柱將不被計數。

               

              通過安裝在籠蓋上的紅外位移傳感器,能方便的測量飼養籠內的大小鼠或其他小型實驗動物的總運動??梢栽谌魏喂饩€條件下測量運動。測量甚至可以在全黑的情況下進行。傳感器記錄一個或多個物體運動,是通過感應體熱圖進行的,也就是說通過紅外輻射,然后將其空間位移作為時間的函數。這種方法能確定籠內的運動并進行定量。這甚至能記錄一個只歷時幾個毫秒的運動。



              動物代謝系統訂購信息

              您可以任意定制滿足您研究需要的Oxylet代謝檢測系統

              您需要多少只動物同時檢測?其中多少只大鼠、多少只小鼠?
              您需要檢測那些數據?其中多少只需要呼吸代謝檢測?多少只需要飲食飲水監測?
              您需不需要為特殊形態的食物或飲料(粉狀食物、粘稠液體)制定飲水槽或飲食槽?
              您需不需要開展2種食物或2種飲料的偏好研究?
              您需不需要監測動物的站立行為?
              您需不需要用于跑步機TreadMill或者用于新生大鼠的呼吸代謝監測?
              非常期待您告訴我們您的需求!

               
               
              使用我們的動物代謝測量分析系統發表的文章:

               

              • Andrade JM et al. (2014) Resveratrol increases brown adipose tissue thermogenesis markers by increasing SIRT1 and energy expenditure and decreasing fat accumulation in adipose tissue of mice fed a standard diet. Eur J Nutr. 2014 Jan 28. In press (mice, Brazil)
              • Bargut TC et al. (2014) Effects of a diet rich in n-3 polyunsaturated fatty acids on hepatic lipogenesis and beta-oxidation in mice. Lipids. 2014 May;49(5):431-44. (mice, Brazil)
              • Bojados M et al (2014) The long-term consequences of the exposure to increasing gravity levels on the muscular, vestibular and cognitive functions in ***** mice. Behav Brain Res. 2014 Feb 7. In press (treadmill, mice, France)
              • Cappelli AP et al. (2014) Taurine-induced insulin signalling improvement of obese malnourished mice is associated with redox balance and protein phosphatases activity modulation. Liver Int. 2014 May;34(5):771-83. (mice, Brazil)
              • Fortunato G et al. (2014) Recovery of pulmonary structure and exercise capacity by treatment with granulocyte-colony stimulating factor (G-CSF) in a mouse model of emphysema. Pulm Pharmacol Ther. 2014 Apr;27(2):144-9. (mice, Brazil)
              • Gaigé S et al. (2014) Modification of energy balance induced by the food contaminant T-2 toxin: a multimodal gut-to-brain connection. Brain Behav Immun. 2014 Mar;37:54-72. (France)
              • Makki K et al. (2014) Beneficial metabolic effects of rapamycin are associated with enhanced regulatory cells in diet-induced obese mice. PLoS One. 2014 Apr 7;9(4):e92684. (mice, France, UK)
              • Nunes-Silva A et al (2014) Treadmill Exercise Induces Neutrophil Recruitment into Muscle Tissue in a Reactive Oxygen Species-Dependent Manner. An Intravital Microscopy Study. PLoS One. 2014 May 5;9(5):e96464. (rat, Brazil)
              • Tha?s R et al. (2014) Acute oral metformin enhances satiation and activates brainstem nesfatinergic neurons. Obesity (Silver Spring). In press (mice, France)
              • Casuso Ra et al. (2013) Ergogenic effects of quercetin supplementation in trained rats. J. Int. Society of Sports Nutrition. 10:3-7 (LE8710R, VO2 mx, exhaustion, rat, Spain)
              • Cettour-Rose P et al. (2013) Quinine controls body weight gain without affecting food intake in male C57BL6 mice. (mice, Switzerland, Japan).
              • Coutinho GVP et al. (2013) Intrauterine protein restriction combined with early postnatal overfeeding was not associated with *****-onset obesity but produced glucose intolerance by pancreatic dysfunction. Coutinho et al. Nutrition & Metabolism 2013, 10:5. (rat, Brazil)
              • Fortunado G et al. (2013) Recovery of pulmonary structure and exercise capacity by treatment with granulocyte-colony stimulating factor (G-CSF) in a mouse model of emphysema. Pulmonary Pharmacology & Therapeutics. In press (mice, treadmill, Brazil).
              • Gaigé S et al. (2013) Modification of energy balance induced by the food contaminant T-2 toxin: A multimodal gut-to-brain connection. Brain Behav Immun. 2013 Dec 16. In press (France)
              • Hyun-Ju K et al. (2013) Metformin decreases meal size and number and increases c-Fos expression in the nucleus tractus solitarius of obese mice. Physiology & Behavior. 110-111:213-220. (Obese mice, Republic of Korea.)
              • Ikonomov OC et al. (2013) Muscle-specific Pikfyve gene disruption causes glucose intolerance, insulin resistance, adiposity and hyperinsulinemia but not muscle fiber-type switching. Am J Physiol Endocrinol Metab. 2013 Jul 1;305(1):E119-31. (mouse, USA)
              • Kim HJ et al. (2013) Central administration of metformin into the third ventricle of C57BL/6 mice decreases meal size and number and activates hypothalamic S6 kinase. American Journal of Physiology - Vol. 305no. R499-R505. (mouse, Korea)
              • Kim HJ et al. (2013) Metformin decreases meal size and number and increases c-Fos expression in the nucleus tractus solitarius of obese mice. Physiology & Behavior, Volumes 110–111. (mouse, Korea)
              • Kim YJ et al. (2013) Longterm supplementation of honokiol and magnolol ameliorates body fat accumulation, insulin resistance, and adipose inflammation in highfat fed mice. Molecular Nutrition & Food Research, Volume 57, Issue 11, pages 1988–1998 (mouse, Korea)
              • Larocca TF et al. (2013) Transplantation of adipose tissue mesenchymal stem cells in experimental chronic chagasic cardiopathy. Arq. Bras. Cardiol. vol.100 no.5 (mouse, Brazil)
                 
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